やぶにらみ生物論１０７： 視覚とは

脳は何のために必要だったのでしょうか？　多くのクラゲは海流に流されるまま、あるいは多少遊泳してエサを採り消化して、何億年も暮らしてきました。そういう生活をする生物にとっては、ある程度の情報統合は必要であっても、脳と言えるような多数の神経細胞の集積は必要なかったわけです。

脳はおそらく視覚から得た情報を統合・解析し、やるべき行動を指示するために必要だったのでしょう。クラゲの中にも高度な眼を持っているグループがいるので、一部は高度な情報処理をしているかもしれません。まず視覚のはじまりから考えていきたいと思います。

最近はヒトの食べ物としても注目されているミドリムシという単細胞の真核生物がいます。ミドリムシは長短２本の鞭毛を持っており、動き回って細菌を食べたりもしますが、一方で体内に葉緑体を保持していて光合成も行なうという一風変わった生き物です。この生物は眼点という赤い点の構造体を持っており、これが光感覚をになうと考えられていましたが、現在では本当の光受容体は鞭毛の基部付近にある傍鞭毛体（または副鞭毛体、図１の８）であることがわかっています（１）。

ミドリムシは光に集まる性質を持っています。それは彼らが光合成を行なうことから目的にかなった行動です。景色や生物を認識するための眼はカンブリア紀にできたと考えられていますが（２、３）、それよりずっと以前から、明るい場所に移動して光合成を行なうために、明るさを測定するための道具として眼がつくられたことは容易に想像できます。

伊関らはミドリムシの傍鞭毛体にある光受容蛋白質をＦＡＤを含むフラビンタンパク質と同定し、このタンパク質がアデニル酸シクラーゼ活性を持つことを報告しています（１）。フラビンタンパク質を光センサーとして用いているのはミドリムシだけではなく、多くの植物で光屈性や気功の開閉などに関わっているフォトトロピンもフラビンタンパク質です（４、５）。数億年にわたる植物の進化の過程で、フラビンタンパク質は光センサーとして連綿と引き継がれてきたというわけです。

図１の右側にはミドリムシ（ユーグレナ）と似て非なるコナミドリムシ（クラミドモナス）という単細胞生物が描かれています。この生物もミドリムシと同様、栄養源を内包する葉緑体によって作りだすことができます。一方で酢酸を栄養源として従属栄養的に生きることもできます（６）。鞭毛は片方が小さくなることなく立派に２本あります（バイコンタ）。そして傍鞭毛体はなく、光は眼点で検知します。名前は似ていますし、独立栄養でも従属栄養でもいきられるという点でも似ていますが、ミドリムシ（ユーグレナ）とコナミドリムシ（クラミドモナス）は構造的には全く異なる生物です。

ユーグレナはフラビンタンパク質を光センサーとして用いていると前述しましたが、クラミドモナスやある種の古細菌（７）は私達と同じロドプシンを持っています。ロドプシンは分子の内部に補因子として、フラビンではなくレチナールを抱え込んでいて、レチナールの構造変換を光を感知する手段として用います（８、９）。ロドプシンについては後に詳述しますが、すべての動物の光センサーはロドプシン－レチナールの構造変換が基本となっています。

ユーグレナは眼点ではなく傍鞭毛体で光を検知すると前述しましたが、ではユーグレナの眼点は何のためにあるのでしょうか？　眼点にはカロテノイドという色素があり、傍鞭毛体への光のシェードのようになっています（図２Ａ）。これによってどの方向から光がきているのか判定しやすくなり、鞭毛がどう動けば良いのか指示を出しやすくしていると考えられます（１０、１１）。

このような方式は、多細胞生物であるプラナリアの眼にも受け継がれており（図２Ｂ）、色素細胞によるシェードは光の方向を判断する上で重要な役割を果たしていると思われます。また複眼の一つ一つをカメラの１画素のように用いる生物、たとえばある種の環形動物（図２Ｃ）や昆虫などは複眼と複眼の間を色素細胞のカーテンで遮断しており、解像度が高められています。

ロドプシンはこのブログでもお馴染みの７回膜貫通タンパク質（１２、１３）の１種です。通常膜貫通タンパク質は細胞外に化学物質の受容部位があり、細胞外から来た情報を細胞内に伝達する役割を持っています。ロドプシンはこの種のタンパク質ですが、ちょっと変わっているのは細胞外に化学物質の受容部位はなく、そのかわり分子内部にレチナールというビタミンＡ（レチノール）がアルデヒド化された光感受性物質を保持しており（図３）、この分子を使って細胞が受けた光情報を細胞内に伝達する役割を持っているところです。

レチナールがロドプシン分子から離れた場合、残されたタンパク質をオプシンと呼びます。すなわち、オプシン＋レチナール＝ロドプシンです。

具体的には図４のように、シス型レチナールが光照射によってオールトランス型レチナールに変換され、その結果ロドプシンの立体構造が変化して、その後の連鎖的化学変化の起点となります。

ロドプシンには大きく分けて、タイプ１（微生物型ロドプシン）：原核生物、藻類に存在、およびタイプ２（動物型ロドプシン）：真核生物以上に存在　の２種類があり、クラミドモナスなどにあるのは前者、私達にあるのは後者ということになります。このほか古細菌などにも別のタイプのもの（バクテリオロドプシン）があり、動物型ロドプシンはＧタンパク質を使ってイオンチャンネルを開閉することによって細胞を過分極・脱分極させてパルスを発生し、神経細胞によって視覚情報を伝達する目的で使われています。微生物型はさまざまな目的で使われており、まとめて議論するわけにはいきません。

図５左に動物網膜の桿体細胞が示してありますが、この細胞の受光側（上側）は細胞膜の面積を増加させるべく折りたたまれたような構造をとっており、そこに多数のロドプシン分子が埋め込まれています。受光の結果オールトランス型となったレチナールは結局ロドプシン分子から解離してフリーとなり、ＡＴＰを消費するレチナールイソメラーゼの酵素作用によって１１－シスレチナールに変換され、１１－シスレチナールはオプシンと再結合してロドプシンが再生されます（１４、図５）。

図６（ウィキペディアより）を使って、動物の場合光照射によってなぜ神経にパルスが発生するかを時系列で箇条書きすると次のようになります。

１．ロドプシンが光照射を受けると、前述のようにレチナールが解離しオプシンとオールトランスレチナールとなります。

２．オプシンは３量体Ｇ蛋白質であるトランスデューシンを活性化します。この結果トランスデューシンは結合していたＧＤＰを失い、代わりにＧＴＰを結合します。

３．トランスデューシンのα サブユニットにＧＴＰが結合すると、α サブユニットはβγ サブユニットから解離し、ＧＴＰを結合したまま単独行動をとります。

４．α サブユニット－ＧＴＰ複合体はフォスフォジエステラーゼを活性化し、その結果細胞内の ｃＧＭＰ（サイクリックＧＭＰ） はＧＭＰに転換し、ｃＧＭＰの濃度が低下します。

５．この結果 ｃＧＭＰ の作用で開いていたナトリウムチャンネルが閉鎖されます。

６．ナトリウムチャンネルが閉鎖されているにもかかわらず、カリウムチャンネルは開いているのでカリウム（細胞内の濃度が高い）が細胞外に放出され、細胞は過分極状態となります。その後の過程で脱分極がおこります。詳細を知りたい方は文献１４～１６を参照して下さい。

図はクリックすると拡大できます。

高度好塩菌は光照射によってロドプシンが構造変化をきたすことを利用して、細胞内の水素イオンを細胞外に能動輸送するというシステムを持っています（１５、図７）。これはミトコンドリアでの電子伝達系と似たメカニズムで、水素イオンが細胞内にもどるときにＡＴＰを合成することができます。すなわちロドプシンを使って、光エネルギーを化学エネルギーに変換するメカニズムです。

真核生物はミトコンドリアを取り込んだので、ロドプシンはいらなくなったかもしれないのですが、それから数十億年後私達はロドプシンでいろんな物を見て識別しています。眼ができるまでにロドプシンが何をしていたのか、それに興味をひかれます。

ロドプシンの発見などについて脳科学辞典に記載がありました（１７）。以下引用しておきます。
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「ロドプシンについて初めて報告があったのは1876〜77年頃である。ドイツのFranz Boll (1849-1879)、続いてFriedrich Wilhelm （通称Willy） Kühne(1837−1900)がカエル網膜の桿体視細胞の外節にある赤い物質の感光性を報告した。 Kühneはこの色を“Sehpurpur”と呼び（英：Visual Purple, 日：視紅）その基となる化学物質をRhodopsin と名付けた。初期の視物質研究では視物質のことをVisual Purpleと呼んでいたが、しだいにRhodopsinが多く使われるようになり現在ではRhodopsinというのが一般的である。 ウシロドプシンの一次配列は1982年に決定され、その翌年にはクローニングされている。」
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発見者のボ－ルとキュ－ネ、および一次構造を明らかにしたオヴチニコフ（１８）の肖像を図８に貼っておきます。なお遺伝子構造はネイサンスとホッグネスによって１９８３年に発表されています（１９）。

ボ－ルはカエルを暗いところに置いておくと網膜が赤くなり、光を当てると褪色することから光感受性物質の存在に気が付きました（２０）。彼は３０歳の若さで夭逝してしまったので、キューネが仕事を引き継ぐことになりました。彼らの業績は２０世紀後半の分子生物学の勃興によって、花開くことになりました。

参照

１）伊関峰生　ミドリムシにおける光センシングの分子機構　Jpn. J. Protozool. Vol. 40, No. 2. , pp. 93-98 (2007)
http://protistology.jp/journal/jjp40/093-100Iseki.pdf

２）アンドリュー・パーカー　眼の誕生　カンブリア紀大進化の謎を解く　草思社　（２００６）

３）渋めのダージリンはいかが　眼の誕生とカンブリア爆発１
http://morph.way-nifty.com/grey/2007/06/post_9cc6.html

４）Masayoshi Nakasako, Kazunori Zikihara, Daisuke Matsuoka, Hitomi Katsura, Satoru Tokutomi., Structural Basis of the LOV1 Dimerization of Arabidopsis Phototropins 1 and 2., Journal of Molecular Biology 381 (3), 718-733 (2008)
http://www.spring8.or.jp/ja/news_publications/press_release/2008/080821/

５）https://ja.wikipedia.org/wiki/%E3%83%95%E3%82%A9%E3%83%88%E3%83%88%E3%83%AD%E3%83%94%E3%83%B3

６）高橋裕一郎、福澤秀哉　モデル生物として注目される緑藻クラミドモナス
蛋白質　核酸　酵素　vol.45, no.12, pp. 1937-1945 (2000)
http://www.molecule.lif.kyoto-u.ac.jp/pdf/pne2000.pdf

７）Bacteriorhodopsin, protein databank japan.,
https://pdb101.rcsb.org/motm/27

８）Oleg A. Sineshchekov, Kwang-Hwan Jung, and John L. Spudich., Two rhodopsins mediate phototaxis to low- and high-intensity light in Chlamydomonas reinhardtii., PNAS,  June 25, vol. 99 (13) pp. 8689-8694 (2002); https://doi.org/10.1073/pnas.122243399
http://www.pnas.org/content/99/13/8689?ijkey=9610ff22c274cb08d7b261283e27286899e851ee&keytype2=tf_ipsecsha

９）Hongxia Wang, Yuka Sugiyama, Takuya Hikima, Eriko Sugano, Hiroshi Tomita, Tetsuo Takahashi, Toru Ishizuka, and Hiromu Yawo., Molecular determinants differentiating photocurrent properties of two channelrhodopsins from Chlamydomonas. J. Biol. Chem. 284, 5685 - 5696. (2009)
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/19103605

１０）https://en.wikipedia.org/wiki/Euglena

１１）https://blog.goo.ne.jp/motosuke_t/e/9e6b34a2218709d79a2024bec3f60ebb

１２）http://morph.way-nifty.com/grey/2017/05/post-38c0.html

１３）http://morph.way-nifty.com/lecture/2017/05/post-e9c6.html

１４）https://en.wikipedia.org/wiki/Visual_phototransduction

１５）https://www.s.u-tokyo.ac.jp/ja/press/2012/03.html

１６）Stefano Costanzi, Jeffrey Siegel,　Irina G. Tikhonova,1and Kenneth A. Jacobson., Rhodopsin and the others: a historical perspective on structural studies of G protein-coupled receptors., Curr Pharm Des. vol.15 (35): pp. 3994–4002. (2009)
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pmc/articles/PMC2801150/

１７）松山 オジョス 武、七田 芳則、　ロドプシン　脳科学辞典
https://bsd.neuroinf.jp/wiki/%E3%83%AD%E3%83%89%E3%83%97%E3%82%B7%E3%83%B3

１８）Yu.A. Ovchinnikov., Rhodopsin and bacteriorhodopsin: structure—function relationships., FEBS lett., vol.148, no.2, pp. 179-191 (1982)
https://febs.onlinelibrary.wiley.com/doi/abs/10.1016/0014-5793%2882%2980805-3

１９）Nathans J, Hogness DS., Isolation, sequence analysis, and intron-exon arrangement of the gene encoding bovine rhodopsin., Cell., vol. 34 (3): pp. 807-814. (1983)
https://www.ncbi.nlm.nih.gov/pubmed/6194890

２０）http://neuroportraits.eu/portrait/franz-christian-boll